干货分享 | 细胞冻存及复苏避坑指南!
细胞培养是生命科学实验中离不开的实验之一,它有广泛的应用。细胞培养可以用于研究细胞的信号转导、合成代谢、生长增殖等。细胞培养的常见实验包括细胞复苏、细胞传代和细胞冻存等,其中细胞冻存及复苏的过程对于细胞生长状态有重要影响。
局部电解质浓度改变,pH值改变,部分蛋白质变性;
细胞内冰晶形成,可引起溶酶体的损伤使溶解酶释放,造成细胞内结构成分的破坏、线粒体肿胀、功能丧失并造成细胞能量代谢障碍;
细胞膜上的类脂蛋白复合体在冷冻中易发生破坏引起膜通透性改变,使细胞内容物丧失;
细胞核在冷冻保存时也易受损。
为了降低在细胞冻存时对细胞的损伤,可以在冻存时加入冻存保护剂甘油或二甲基亚砜(DMSO)(SKU:02196055)以降低对细胞损伤或死亡。DMSO作为渗透性细胞保护剂,其能够迅速穿透细胞膜进入细胞中,防止细胞内液冰晶的形成,以及防止细胞结构紊乱等。
二甲基亚砜(DMSO)结构式
研究表明,不同浓度的DMSO对细胞活力均有影响,DMSO浓度不超过10%时,对细胞的活力影响较小(如图1)。除此之外,DMSO浓度为10%时,抑菌效果能够接近100%。在DMSO中加入适宜浓度的血清,有助于解冻后提高细胞收获率和其功能活性的恢复。因此,细胞冻存时常常使用10%浓度的DMSO,可以在其中加入胎牛血清等作为保护剂,血清有助于解冻后细胞功能活性的恢复(如图2为细胞冻存流程图)。
图1. DMSO浓度与细胞活力[1]
图2. 细胞冻存操作流程图
细胞复苏是指将冻存在液氮或低温冰箱中的细胞解冻后重新培养,使其恢复生长的过程。细胞复苏过程中,需要遵循快速融化的原则,这样可以保证细胞外结晶短时间内融化,避免由于缓慢融化使水分渗入细胞内再形成冰晶对细胞造成损伤。细胞复苏后1-2天,细胞活性会逐渐得到恢复(如图3为复苏HEK293T细胞数对数值)。
细胞复苏的主要实验过程如下:
步骤1:从液氮容器或低温冰箱中取出冻存管,迅速将其浸入37℃的温水中,并不时摇动以使其尽快融化。37℃水浴时间尽可能短(1-2min),因为延长时间会增加细胞死亡率;
步骤2:当细胞完全融化后,从水浴中取出冻存管,用酒精棉球消毒外部,然后开启瓶盖;
步骤3:将细胞悬液转移到离心管中,加入适量的培养液,并进行离心,以去除DMSO和死细胞;
步骤4:离心后,弃去上清液,用新的培养液重悬细胞,并计数,调整细胞密度;
步骤5:将细胞接种到培养瓶中, 37℃静置培养。在培养初期,应注意观察细胞状态,以确保其正常生长。
图3. HEK-293T细胞生长曲线(复苏后)[2]
图4. 细胞复苏操作流程图
细胞冻存及复苏是细胞培养常见的实验方法,选择合适的方法以及合理的操作能够保证细胞的活性。除此之外,选择合适的冻存保护剂也是该实验中较为关键的一步,例如DMSO应当选择内毒素水平低、细胞培养级的产品,能够降低对细胞的损伤。
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参考文献:
[1] Addison CJ, Chu SH, Reusch RN. Polyhydroxybutyrate-enhanced transformation of log-phase Escherichia coli. Biotechniques. 2004 Sep;37(3):376-8, 380, 382. doi: 10.2144/04373ST01. PMID: 15470891.
[2] 杨彪,梅晰凡,刘福强.HEK-293细胞复苏培养及冻存[J].辽宁医学院学报,2007,(06):1-3.
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