功能菌株筛选全流程解决方案丨低丰度功能菌富集篇
前言
图1 (低丰度)微生物具有重要的生态功能及应用价值
图2 现有微生物富集方法均无法针对低丰度功能类群进行富集
技术原理
MMI是一种新的方法,可以在不标记的情况下分离微生物群落中快速生长和缓慢生长的种群。MMI通过生物相容性磁性纳米颗粒(magnetic nanoparticles, MNPs)对群落中微生物进行非特异性磁化,即磁化样品中的所有微生物细胞。随后在适宜的底物和环境下对样品进行培养,其中具有代谢活性的微生物会随着细胞的持续分裂和增殖而丢失其表面的MNPs,直至失去磁性;而分裂不活跃的微生物(通常为低丰度菌群)表面的MNPs会始终保持磁性。最后,通过外部磁场的作用将分裂的细菌与保持磁性的非分裂细菌分离开,分别获得高丰度与低丰度的类群(图3)。
MMI富集获得的低丰度微生物仍是群体状态,为深入研究其功能性,MMI可以与稳定同位素探针技术(Stable isotope probe, SIP)相结合,从复杂的环境样品中检测低丰度的功能微生物单细胞,例如,13C标记底物可识别降解菌,1?N标记底物可识别固氮菌,在抗生素、高温、酸性等选择性压力环境下使用D?O孵育可识别耐药菌或极端耐受菌。这些功能菌株可进一步应用自主开发的PRECI SCS可视化单细胞分选仪将功能菌分离出来,进行培养、单细胞测序或多组学研究,建立微生物的功能表型与基因型的关联关系,从而更好地实现微生物资源的开发利用。
Protocol
磁性纳米颗粒制备
1 M FeCl? 1 mL与2 M的FeCl? 2 mL充分混匀;
2 M NaOH溶液25 mL缓慢逐滴加入到上述溶液中,涡旋搅拌30 min,形成黑色的氧化铁沉淀;
用永磁铁收集合成的上述磁性纳米颗粒(MNPs),无菌水清洗约5-7次,直至溶液pH=7;
取5 mL MNPs与45 mL 10mg/mL丙烯胺盐酸盐(一种阳离子聚电解质,使MNPs带正电)混合;
75 W,40 KHz超声60 min,使MNPs稳定;
10000 g 离心10 min,重悬于50 mL去离子水中,涡旋混匀;
使用0.2 mm滤器过滤,保存待用。
低丰度微生物富集
土壤等环境样品溶于10mL水中,充分震荡提取细菌,3000rpm离心10 min去样品杂质,收取上清样品;
10 ml样品与10 mL MNPs溶液混合;
细菌-MNP混合物室温下150rpm震荡20min;
使用永磁体将细菌-MNP从水中分离提取出来,重悬于去离子水中,反复洗涤3次;
将细菌-MNP重悬于10 mL培养基中或者过滤消毒的原环境培养基中;
培养过程中,MNPs被逐渐稀释,进而消失磁性,同时达到富集细胞的作用。
应用案例
基于MMI-SIP-RACS技术的菲降解菌筛选研究
图5 基于MMI-SIP-RACS技术的降解菌筛选流程图
图6 经过MMI-SIP富集后,目标菌丰度从原始样品(T0)的0.03%提高至10.9%
图7 菲降解菌的单细胞拉曼识别(13C峰位偏移)及可视化分选(应用PRECI SCS-R300拉曼单细胞分选仪)
图8 PRECI SCS-R300的单细胞识别与自动化分选过程
Q & A
Q:MMI方法是微生物通用型标记还是特异性标记?
A:MMI方法是一种通用标记方法,利用磁性纳米颗粒表面聚合物结合所有类型细胞,包括细菌、真菌等。不同类型细胞差异略有差别,但是不影响后续磁性分离分离功能微生物的效率。
Q:MMI方法对于微生物的标记是普适性的结合吗?有没有不同种间的捕获率差异?
A:MMI技术对微生物的标记是通用性结合。磁性纳米材料表面修饰了一层多聚物外壳,可以跟所有微生物进行高效结合。当然这种方法对不同微生物细胞的结合效率是有差异的,比如对革兰氏阴性菌的结合效率比革兰氏阳性菌好一些,对微生物细胞比对哺乳动物细胞好一些,但是这种差异是百分比数量级,比如5-20%的差异。这种差异对研究微生物活性的影响很小,经测试具有活性的微生物在分裂后磁性只有原来的1%-1‰,所以这种标记差异对高活性及低活性微生物分离的影响不大。此外,也可通过对磁性纳米颗粒的修饰,实现对特定种类微生物的捕获与富集分离。
Q:对于复杂环境样本如土壤,MMI方法可以适用吗?
A:MMI方法非常适用于土壤样本,相关文献包括[1]Jiang, B., Chen, Y., Xing, Y., Lian, L., Shen, Y., Zhang, B., Zhang, H., Sun, G., Li, J., Wang, X. and Zhang, D., Negative correlations between cultivable and active-yet-uncultivable pyrene degraders explain the postponed bioaugmentation, Journal of Hazardous Materials, 2022, 423, 127189. [2]Wang, X., Zhao, X., Li, H., Jia, J., Liu, Y., Ejenavi, O.E., Ding, A., Sun, Y. and Zhang, D., Separating and characterizing the active and functional alkane degraders from crude oil contaminated sites via magnetic nanoparticle-mediated isolation (MMI), Research in Microbiology, 2016, 167, 731-744. [3]Jiang, B., Lian, L., Xing, Y.*, Zhang, N., Chen, Y., Lu, P. and Zhang, D.*, Advances of magnetic nanoparticles in environmental application: Environmental remediation and (bio)sensors as case studies, Environmental Science and Pollution Research, 2018, 25(31), 30863-30879。
Q:MMI技术富集微生物,会影响后续拉曼检测的信号吗?
A:根据MMI的原理,我们知道所富集获得的微生物其表面的磁性纳米颗粒基本上都脱落了,不具备磁性。根据既往实验结果,它们和其他细胞一样,不会影响后续的拉曼检测。另外,如果需要分离特定功能的微生物细胞,还需要进行稳定同位素标记,然后再进行拉曼检测。
Q:MMI技术有什么短板吗?
A:目前最大的短板是不可避免在一定程度上改变研究对象的微环境。首先,给微生物包覆一层物质会非常细微的影响微生物的代谢;其次,在这个过程中会引入一些原始环境中没有的元素,可能对微生物群落代谢造成影响,比如磁性纳米颗粒中的铁元素,可能会对环境介质中的铁流循环或者电子传递非常敏感的过程产生影响。电子可能会随着磁性纳米颗粒来转导而不遵循原有的代谢途径,导致对某些特定的过程(如反硝化和铁流循环)产生一定影响。这种微环境或电子传递环境的变化可能会导致分析结果存在一定偏差,这也是科学家们正在解决的问题。
Q:磁性标记物如何控制单个细胞的分选?
A:MMI技术的磁性标记不是用于单个细胞的分选,而是将原有微生物群落中1/1000到1/10000的功能微生物通过磁性变化进行群体富集,使之在分离后的丰度达到5-50%,便于提高后续单细胞分选的效率和速度。使用MMI方法将低丰度菌富集后,可进一步使用PRECI SCS微生物单细胞分选仪进行单细胞的可视化分离。
参考文献
[1] Jibing Li, Dayi Zhang, Bei Li, Chunling
Luo,* and Gan Zhang, Identifying the Active Phenanthrene Degraders and
Characterizing Their Metabolic Activities at the Single-Cell Level by the Combination
of Magnetic-Nanoparticle-Mediated Isolation, Stable Isotope Probing, and
Raman-Activated Cell Sorting (MMI?SIP?RACS), Environmental
Science & Technology, 2022 Feb 15;56(4):2289-2299.
[2] Nan Rong, Shiying He, Bei Li, Xiangui
Lin, Xiaoling Liu, Yongjie Yu, Youzhi Feng, Coupled magnetic nanoparticle-mediated isolation and
single-cell image recognition to detect Bacillus’ body size in soil, European
Journal of Soil Science, 2022;73:e13236.
[3] Jibing Li, Chunling Luo, Gan Zhang,
Dayi Zhang, Coupling magnetic-nanoparticle mediated isolation (MMI) and stable isotope probing (SIP) for identifying and isolating the active microbes
involved in phenanthrene degradation in wastewater with higher resolution and accuracy, Water Research, 2018 Nov 1:144:226-234.
[4]Jiang, B., Chen, Y., Xing, Y., Lian, L., Shen, Y., Zhang,B., Zhang, H., Sun, G., Li, J., Wang, X. and Zhang, D., Negative correlations between cultivable and active-yet-uncultivable pyrene degraders explain the
postponed bioaugmentation, Journal of Hazardous Materials, 2022, 423, 127189.
[5]Wang, X., Zhao, X., Li, H., Jia, J., Liu, Y., Ejenavi, O.E.,
Ding, A., Sun, Y. and Zhang, D., Separating and characterizing the active and
functional alkane degraders from crude oil contaminated sites via magnetic
nanoparticle-mediated isolation (MMI), Research in Microbiology, 2016, 167,
731-744.
[6]Jiang, B., Lian, L., Xing, Y.*, Zhang, N., Chen, Y., Lu, P.and Zhang, D.*, Advances of magnetic nanoparticles in environmental application: Environmental remediation and (bio)sensors as case studies,
Environmental Science and Pollution Research, 2018, 25(31), 30863-30879。
[7] Dayi Zhang, James P Berry, Di Zhu, YunWang, Yin Chen, Bo Jiang, Shi Huang, Harry Langford, Guanghe Li, Paul A Davison, Jian Xu, Eric Aries, Wei E Huang, Magnetic nanoparticle-mediated isolation of functional bacteria in a complex microbial community, The ISME Journal,2015 Mar;9(3):603-14.
END
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